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准备工作:
选择合适的Transwell小室:根据实验需求选择合适孔径的Transwell小室(通常是8μm或12μm孔径用于迁移实验,而24μm孔径常用于侵袭实验)。
细胞培养:将细胞培养至对数生长期。
制备细胞悬液:用无血清培养基重悬细胞,并调整细胞浓度。
实验步骤:
接种细胞:将细胞悬液加入Transwell小室的上室,确保细胞均匀分布。
添加趋化剂:在下室加入含有血清或特定趋化因子的培养基,以吸引细胞向下室迁移。
迁移:将Transwell小室放入培养箱中,根据实验设计孵育一定时间(通常为16-24小时)。
终止迁移:孵育时间结束后,取出Transwell小室。
清除未迁移细胞:使用棉签或PBS轻轻擦去上室表面的未迁移细胞。
固定:用甲醇或甲醛固定迁移到膜下的细胞。
染色:使用结晶紫、吉姆萨染液或其他细胞染色剂对迁移到膜下的细胞进行染色。
清洗:用PBS清洗多余的染料。
图像获取:将Transwell膜置于显微镜下,拍摄迁移细胞的图像。
细胞计数和分析:计数迁移到膜下特定区域的细胞数量,或者使用图像分析软件进行定量分析。
数据分析:
通过比较不同实验组之间的细胞迁移数量,可以评估细胞迁移能力的差异。
可以进行统计分析(如t检验或ANOVA)来确定结果的显著性。
注意事项:
确保细胞密度适宜,过密或过稀都会影响实验结果。
轻柔操作以避免损伤细胞或破坏Transwell膜。
实验条件(如孵育时间、细胞密度、趋化剂浓度)需要标准化,以确保实验的可重复性。
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